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类器官多模态成像综述:多技术协同构建 “动态 - 结构 - 功能” 完整解决方案

2026-03-26

类器官多模态成像综述:多技术协同构建 “动态 - 结构 - 功能” 完整解决方案

在类器官研究中,“看清楚” 是 “研究透” 的前提 —— 不同发育阶段、不同研究目标,需要搭配不同的成像技术。结合 3D 细胞培养与监测方案及高分辨率 3D 成像方案,我们梳理出类器官相关三类核心成像技术的适用场景,精准匹配实验需求,实现类器官的 “形态、功能、动态” 多维度研究需求

Part.01

长时程高内涵动态成像:活细胞 “全程追踪”,适配高通量、动态的研究场景

这类技术以 “不干扰生长、全周期记录、多参数分析” 为核心,通过模拟体内培养环境(稳定温湿度、精准气体控制),实现类器官从形成到响应外界刺激的动态监测,尤其适合需要 “长时间、无间断、量化分析” 的研究场景。



核心技术特点

依托 BioTek Cytation™成像系统 + BioSpa8 自动化培养模块 + MultiFlo FX 无损换液系统,可实现:

无人值守培养:8 位独立培养位,精准控制 CO₂/O₂浓度、温度(最高 45℃)和湿度,避免人为操作干扰;

动态成像与量化:明场观察类器官成球过程,荧光场追踪标记分子(如 GFP 标记 CD29),Gen5 软件自动输出体积、荧光强度等参数;

无损处理:AMX 模块实现 自动化3D 细胞球无损伤换液后续操作。

适配研究场景

1. 类器官培养条件优化与质量监测

需求:筛选最佳培养基配方、接种密度,确保类器官形态均一、活性稳定(如干细胞类器官成球率、肿瘤类器官侵袭能力一致性);

应用:通过明场动态成像,对比不同接种密度(如 1k / 孔、5k / 孔、10k / 孔)下类器官的成球时间、直径分布,结合活细胞荧光染料(如 Calcein AM)评估活性,快速确定最优培养条件;

通过肠道类器官的表型变化“膨胀”评价天然产物对CFTR基因的作用。


2. 活细胞动态追踪类研究(如 CAR-T 细胞杀伤、干细胞分化)

需求:实时观察细胞间相互作用(如 CAR-T 细胞与肿瘤类器官的结合、杀伤过程),或长时程追踪细胞状态变化(如干细胞向特定细胞类型分化);

应用:

CAR-T 研究:用荧光标记 CAR-T 细胞(如 RFP 标记)和肿瘤类器官(GFP 标记),连续 24-48 小时监测 CAR-T 细胞向类器官的迁移、浸润及类器官的形态崩解,量化杀伤效率;

干细胞分化:标记分化标志物(如肝细胞类器官用 CY5 标记白蛋白、胆管细胞用 Texas Red 标记 CK19),连续 10-20 天追踪标志物表达变化,解析分化时序;



Part.02

多重免疫荧光成像:细胞 “身份识别”,解析类器官功能异质性

类器官是 “功能异质性” 的细胞集合体(如乳腺类器官含 luminal 细胞、基底细胞,肾类器官含肾小管细胞、肾小球细胞),多重免疫荧光通过特异性标记 “功能标志物”,精准区分细胞类型、定位功能区域,适配需解析细胞组成与功能的场景。


核心技术特点

多标志物同时标记:可结合 4-6 种荧光染料(如 DAPI、GFP、Texas Red、CY5),分别标记细胞核、细胞骨架、特异性蛋白;

高特异性:依赖单克隆抗体与抗原的特异性结合(如用抗 E-cadherin 抗体标记上皮细胞连接,抗 MMP-14 抗体标记肿瘤侵袭细胞);

类器官免疫化模型等:对细胞互作,空间位置关系等进行分析。


适配研究场景


1. 类器官细胞组成与功能验证

需求:确认类器官是否分化出目标细胞类型,或验证特定细胞的功能(如肝类器官的胆汁分泌、胰类器官的胰岛素分泌)。

应用:

疾病建模与发病机制研究

模拟疾病状态下类器官的细胞组成变化(如囊性纤维化(CF)肠道类器官的腔道结构异常、阿尔茨海默病脑类器官的神经元损伤)。

BD脑类器官中的线粒体功能障碍分析。D-I)使用HALO量化线粒体质量水平、健康状态及能量状态。

2.细胞间相互作用与信号通路研究

需求:观察类器官中不同细胞间的信号传递(如肿瘤细胞与成纤维细胞的旁分泌作用),或特定信号通路的激活状态(如 Wnt、Notch 通路)。

应用:

免疫治疗药物毒性对肠道类器官中免疫-上皮相互作用的影响

肿瘤类器官微环境分析:标记肿瘤细胞(抗 Her2 抗体)、基质细胞(抗 α-SMA 抗体)、免疫细胞(抗 CD45 抗体),解析肿瘤微环境中不同细胞的空间分布,探索相互作用机制;


Part.03

组织透明化 3D 成像:“穿透” 类器官,观察深层结构与空间关系

当类器官体积较大(直径 > 100μm)时,传统荧光成像因 “光线散射” 无法穿透深层,导致 “表面清晰、内部模糊”。组织透明化技术通过 “消除细胞与基质的折射率差异”,实现全深度 3D 成像,适配需观察类器官内部结构、空间分布的场景。

核心技术特点


简单安全:1 步透明(20 分钟室温孵育),不破坏荧光信号;

高兼容性:适配 confocal、多光子、光片显微镜,可观察 100-500μm 的类器官;

长期保存:透明后的类器官可在 - 20℃保存 6 个月,荧光信号损失 < 10%;

兼容多种标记策略:透明后可重新孵育抗体,进行二次标记。

适配研究场景

1. 类器官内部结构与空间形态分析

需求:观察类器官的三维结构(如肠道类器官的绒毛 - 隐窝结构、脑类器官的神经管结构),或评估结构完整性(如损伤后修复情况);

应用:

肠道类器官:透明后用 confocal 进行 Z-stack 扫描,重建 3D 结构,观察隐窝区域的干细胞分布(Lgr5 + 细胞)与绒毛区域的分化细胞分布,量化隐窝数量与深度;

肺类器官:观察透明后的类器官内部纤毛的分布与运动状态,评估肺类器官的呼吸功能模拟能力;


2. 大体积类器官或类器官共培养的深层观察

需求:观察多细胞共培养类器官(如肿瘤类器官 + 成纤维细胞 + 免疫细胞)的深层细胞分布,或大体积类器官(如肝类器官球体)的内部功能区域;

应用:

肿瘤类器官共培养模型中,可能通过旁分泌信号增加药物敏感性。


3. 类器官发育过程中的结构动态变化

需求:追踪类器官从早期成球到成熟的内部结构变化;

应用:

类器官血管化:类器官透明化三维成像结果显示,含iLSEP的类器官(HLBO)中形成了CD32b⁺/FVIII⁺分支状的血管网络,其结构与胎儿肝脏中的窦状血管相似。

Part.04

多技术协同:构建类器官研究的完整解决方案

单一成像技术各有侧重,只有协同应用才能覆盖类器官研究的全需求:

动态追踪 + 功能标记:长时程成像记录类器官对药物的动态响应,多重免疫荧光标记特定功能细胞,可分析药物对不同细胞亚群的选择性作用(如肿瘤类器官中药物对肿瘤细胞与基质细胞的差异影响);

功能标记 + 透明化成像:先通过多重免疫荧光定位功能细胞,再经透明化处理,用 3D 成像观察功能细胞在类器官内部的空间分布(如肝类器官中肝细胞与胆管细胞的三维排列);

动态追踪 + 透明化成像:长时程监测类器官发育过程,定期取样进行透明化 3D 成像,可完整还原从早期成球到成熟结构形成的空间变化(如肾类器官从细胞团到肾小管、肾小球的发育历程)。


综上,类器官研究的核心需求在于还原其 “类体内” 的 3D 特性与动态变化,而长时程动态成像、多重免疫荧光成像、组织透明化 3D 成像的协同应用,正是满足这一需求的关键 —— 它们并非独立技术,而是相互补充、相互赋能的完整解决方案,推动类器官研究从 “定性观察” 走向 “定量、精准、系统的机制解析”。



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